大鼠胃动素ELISA试剂盒说明书

(用于血清、血浆、细胞培养上清液和其它生物体液内)

原理

本实验采用双抗体夹心 ABC-ELISA法。用抗大鼠 Motilin 单抗包被于酶标板上，标准品和样品中的 Motilin与单抗结合，加入生物素化的抗大鼠Motilin，形成免疫复合物连接在板上，辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物素结合，加入底物工作液显蓝色，最后加终止液硫酸，在450nm处测OD值，Motilin浓度与OD值成正比，可通过绘制标准曲线求出标本中Motilin浓度。

试剂盒组成（2-8℃保存）

酶标板（Coated Wells） 10×标本稀释液（Sample Buffer） 标准品（Standards）：40ng/瓶 96孔 12ml 2瓶 酶标抗体工作液（Enzyme Conjugate） 20×浓缩洗涤液（Wash Buffer） 底物工作液（TMB Solution） 终止液（Stop Solution） 12ml 50ml 12ml 12ml 第一抗体工作液（Biotinylated Antibody） 12ml 准备试剂与收集血样

1. 收集标本：血清、血浆（EDTA、柠檬酸盐、肝素抗凝）、细胞培养上清液、组织匀浆等尽早检测，

2-8℃保存48小时；更长时间须冷冻（-20℃或-70℃）保存，避免反复冻融。

2. 标准品液配制：使用前加入1ml蒸馏水混匀，配成40ng/ml的溶液。设标准管8管，第一管加标本

稀释液900ul，第二至第八管加入标本稀释液500ul。在第一管中加入40ng/ml的标准品溶液100ul混匀后用加样器吸出500ul，移至第二管。如此反复作对倍稀释，从第七管中吸出500ul弃去。第八管为空白对照。

3. 10×标本稀释液用蒸馏水作1:10倍稀释（示例：1ml浓稀释液+9ml蒸馏水）。 4. 洗涤液：用重蒸水1:20稀释（示例：1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水）

检测程序

1. 加样：每孔各加入标准品或待测样品100ul，将反应板充分混匀后置37℃120分钟。 2. 洗板：用洗涤液将反应板充分洗涤4-6次，向滤纸上印干。

3. 每孔中加入第一抗体工作液100ul。将反应板充分混匀后置37℃60分钟。 4. 洗板：同前。

5. 每孔加酶标抗体工作液100ul。将反应板置37℃30分钟。 6. 洗板：同前。

7. 每孔加入底物工作液100ul，置37℃暗处反应15分钟。 8. 每孔加入100ul终止液混匀。

9. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。

结果计算与判断

1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。

2. 以标准品4000、2000、1000、500、250、125、62.5、0 pg/ml为横坐标，OD值为纵坐标，在坐

标纸上作图，画出标准曲线。

3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应Motilin含量。

试剂盒性能

1. 灵敏度：最小的Motilin 检测浓度小于30pg/ml。

2. 特异性：可同时检测重组或天然的大鼠Motilin。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。 3. 重复性：板内、板见变异系数均小于10％。

注意事项

1. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔，每次测定应同时做标准曲线。 2. 洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。 3. 板条开封后剩余板条要再封好，保持板条干燥。 4. 本试剂盒宜置4C冰箱保存。

5. 本试剂盒仅用于科研，不能用于临床诊断！

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